1. 剪尾采血
当所需血量较少时,可以采用剪尾采血法。首先,固定动物并暴露其鼠尾。将尾部的毛发剪去并进行消毒,随后将尾浸入约45℃的温水中数分钟,以使血管充盈。接着,擦干尾部,使用锐器(如刀或剪刀)剪去尾尖约0.3-0.5厘米,让血液自由滴入收集器中,或者使用血红蛋白吸管进行采集。采血后应对伤口消毒并施加压力止血。此法每只小鼠通常可进行超过10次采血,每次小鼠可取血0.1毫升,大鼠则可取血0.3-0.5毫升。
2. 鼠尾刺血法
针对血量需求不大的情况(例如进行白细胞计数或血红蛋白检查),可采用鼠尾刺血法。首先,用温水擦拭鼠尾,再用酒精消毒,以促使鼠尾充血。然后,使用7号或8号针头刺入鼠尾静脉,拔出针头时会有血液流出,每次可采集10-50毫升。如果需反复取血,应该从鼠尾末端开始,逐渐向心端刺入。
3. 眼眶静脉丛采血
采血者的左手拇指和食指应紧握小鼠或大鼠的颈部(大鼠需佩戴纱手套),以防止动物窒息。在取血时,左手轻轻压迫动物的颈部两边,促进眶后静脉丛充血。右手持7号针头的1毫升注射器或长颈(3-4厘米)硬质玻璃滴管,以约45度的角度由眼内角刺入,刺入后调整针头方向,并在感到阻力时停止推进,边退边抽。适当穿刺后,血液会自然流入收集器中。体重20-25克的小鼠每次可采血0.2-0.3毫升,而200-300克的大鼠可采血0.5-1毫升,适用于多项生化检测。
4. 断头取血
采血者可用左手拇指和食指紧握大(小)鼠的颈部皮肤,并使动物呈头朝下的姿势。右手使用剪刀猛剪鼠颈,约1/2至4/5的颈部前段剪断,使血液自由流入盛器。小鼠可采集约0.8-1.2毫升血液,大鼠约5-10毫升。
5. 心脏采血
由于鼠类心脏较小且心率较快,心脏采血相对困难,因此不常使用。如需活体采血,方法与豚鼠相同;若进行开胸死亡采血,需先对动物进行深麻醉,打开胸腔,暴露心脏,使用针头刺入右心室吸取血液,小鼠约0.5-0.6毫升,大鼠约0.8-1.2毫升。
6. 颈动静脉采血
首先将动物固定在仰位,切开颈部皮肤,分离结缔组织使颈静脉充分暴露,可使用注射器吸出血液。同时,分离出颈动脉,并在离心端结扎,向心端剪断,并将血液引入试管内。
7. 腹主动脉采血
建议先对动物麻醉,仰卧并固定在手术架上,从腹正中线切开腹腔,使腹主动脉充分暴露。可使用注射器吸出血液,以防止溶血;或用无齿镊子夹住动脉并剪断,使血液喷入收集器。